Сравнение эффективности двух способов выпуска хищного клеща Amblyseius cucumeris в борьбе с западным цветочным трипсом

/

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА

РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ФГОУ ВПО «САНКТ - ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ

АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ»

Факультет заочного обучения

Кафедра биологической защиты растений

Выпускная квалификационная работа

По специальности 110203.65 «Защита растений»

Сравнение эффективности двух способов выпуска хищного клеща Amblyseius cucumeris в борьбе с западным цветочным трипсом

Санкт-Петербург - Пушкин 2008 г.

Содержание

Введение

1. Фауна трипсов на овощных культурах в теплицах и меры борьбы с ними (обзор литературы)

1.1 Подотряд Terebrantia - Яйцекладные, семейство Thripidae

1.1.1 Подсемейство Нeliothripidae (Panchaetothripidae

1.1.2 Подсемейство Thripinae

1.2 Подотряд Tubulifera - трубкохвостные Трипсы

1.3 Вредоносность трипсов

1.4 Меры борьбы с трипсами

1.4.1 Агротехнические меры

1.4.2 Химический метод

1.4.3 Биологические

1.5Хищные клещ Amblyseius cucumeris

2. Экспериментальная часть

2.1Условия проведения экспериментов, материал и методы

2.1.1 Условия проведения экспериментов

2.1.2 Разведение клещей

2.1.3 Выпуски и учеты

2.2 Результаты и обсуждение

2.2.1 Оценка влияния двух способов выпуска Amblyseius cucumeris на численность западного цветочного трипса

2.2.2 Сравнение эффективности двух способов выпуска Amblyseius cucumeris для борьбы с западным цветочным трипсом на огурце

3. Экономическая эффективность использования двух способов выпуска хищного клеща Amblyseius cucumeris для биологической борьбы с западным цветочным трипсом

3.1 Расчёт себестоимости производства амблисейуса в биолаборатории ФГУ «ФГТ Ленинградская СТАЗР» в 2007 году

3.2 Расчет экономической эффективности применения применения двух способов выпуска Amblyseius cucumeris в борьбе с западным цветочным трипсом на огурце

4. Безопасность и экология

4.1 Анализ условий и охрана труда

4.2 Организационные мероприятия и рекомендации по улучшению

условий труда

4.3 Производственная санитария

4.4 Техника безопасности и пожарная безопасность

4.5 Безопасность в чрезвычайных ситуациях

4.6 Экология

Выводы

Список цитированной литературы

Приложения

Введение

Трипсы являются одними из основных видов, которые вредят на овощных культурах в теплицах. Химические обработки, проводимые против них, препятствуют широкому применению фитосейулюса, энкарзии, галлицы и других энтомоакарифагов. Значение табачного трипса (Thrips tabaci Lind.) в Российской Федерации особенно сильно возросло в 70-е годы прошлого столетия, когда против паутинного клеща стали применять фитосейулюса. Так, в хозяйствах ПО «Лето», площади огурца, заселённые табачным трипсом в теплицах под стеклом возросли с 1976 по 1990 год в 1,8 раза, с 477,7 до 851 тыс. м², в теплицах под плёнкой, соответственно, в 6,9 раза, с 41,6 до 288 тыс. м².

В целом, отряд трипсов (Thysanoptera) насчитывает около 5000 видов, 93 % которых принадлежат к двум семействам: Thripidae и Phlaeothripidae. Около половины всех известных трипсов питаются растениями. Несколько сотен видов сильно вредят различным культурным растениям. Они высасывают соки из листьев, цветков и плодов, являются переносчиками вирусов, загрязняют растения своими выделениями (Ижевский и др., 1999).

В 1989 году, в цветочно-карантинном питомнике г. Санкт-Петербурга, на хризантемах был обнаружен калифорнийский, или западный цветочный трипс - Frankliniella occidentalis Perg. Одновременно он появился в головном хозяйстве фирмы «Лето» совхозе «Ленинградский». В настоящее время этот вид широко встречается в теплицах Северо-Запада России наряду с табачным, обыкновенным (разноядным) и другими видами трипсов.

В борьбе с трипсами испытываются различные биопрепараты, полезные насекомые и клещи. Однако, в большинстве лабораторий тепличных комбинатов разводят и применяют хищных клещей из рода Amblyseius, в частности A. cucumeris (Oudеmans, 1930).

Различный видовой состав трипсов вредящих в теплицах, разнообразие культур, технологий и условий их возделывания, делает биологическую борьбу с ними трудной задачей для производственников. Эффективность амблисейусов по ряду причин (не правильно определённые сроки, нормы и кратность выпусков хищников, высокая, иногда низкая температура воздуха в теплицах, пониженная относительная влажность и др.) часто бывает недостаточной для защиты растений.

Дополнительные сложности возникают при выращивании растений в крупноблочных теплицах на минеральной вате (rockwool), или гродане. Капельный полив растений (на кубик, в котором находится корень растения) не может в сухую солнечную погоду обеспечить влажность воздуха, достаточную для нормального выживания и размножения хищных клещей (Ащеулов, Коржова, 2005). Учитывая, что площади для выращивания растений на гродане постоянно увеличиваются оптимизация технологий биологической защиты растений от вредителей в новых условиях представляется вполне актуальной.

Целью данной работы является подбор эффективных технологий выпуска хищных клещей для биологической борьбы с западным цветочным трипсом (Frankliniella occidentalis Perg.) на огурце, выращиваемом в теплицах по новым технологиям.

В задачи нашего исследования входило оценка и сравнение эффективности двух способов выпуска A. cucumeris (методом разбрасывания по листьям растений и путем внесения на гродановый кубик) в подавлении численности западного цветочного трипса на листьях и в цветках растений огурца.

1. Фауна трипсов на овощных культурах в теплицах и меры борьбы с ними (обзор литературы)

Трипсов часто называют также бахромчатокрылыми или пузыреногими насекомыми. Действительно, для них характерно наличие 2 пар узких крыльев, усаженных по краю бахромой из тонких волосков; а между коготками лапок у всех трипсов имеются пузыревидные присоски. Размеры взрослых насекомых варьируют i пределах от 0,5 до 5,0 мм. Кожные покровы тела обычно с тонком поперечной морщинистостью или сетчатой структурой, иногда гладкие. Окраска покровов однообразная; преобладают черный, бурый, серый или желтый цвета (Ижевский и др., 1999).

Голова в верхней части значительно короче, чем в нижней, т.к. лоб сильно скошен назад и переходит в ротовой конус, иногда достигающий среднегруди. Ротовой конус образован верхней губой, наружными лопастями челюстей и нижней губой. Внутри ротового конуса помещаются подвижные челюсти, с помощью которых прокалывается субстрат и засасывается пища. Челюстные щупики 2 - 8-члениковые (обычно 2 - 3), губные щупики 1 - 5 -члениковые. Сложные глаза состоят из крупных фасеток и занимают обычно 1/2 -- 1/3 длины головы. 3 простых глазка расположены между глазами треугольником. Из щетинок, расположенных на голове, диагостическое значение имеют оцсллярныс, или глазковые, и постокулярные, или заглазные (рис. 1).

Усики 4 - 10-члениковые. У яйцекладных трипсов шестой членик обычно самый длинный, последующие вершинные членики маленькие и называются грифелем. Членики усиков несут щетинки, микроскопические волоски - микротрихии и сенсиллы. 2-й членик с округлой колоколовидной сенсиллой, такие же сенсиллы имеются на крылогруди и тергитах брюшка. Число сенсилл, их расположение, форма и размеры имеют диагностическое значение.

Переднегрудь подвижно соединена с головой и среднегрудью. Важное диагностическое значение имеют крупные щетинки, расположенные на передних и задних углах, переднем и заднем краях переднеспинки. Число и расположение этих щетинок у яйцекладных трипсов служат родовыми признаками. У трубкохвостых трипсов переднеспинка обычно с 5 парами крупных щетинок: переднекрайние, переднеугловые, среднебоковые, эпимеральные и заднеугловые. Среднегрудь и заднегрудь срослись между собой, образуя крылогрудь или птероторакс. Скульптура заднеспинки и расположенные на ней срединные щетинки имеют диагностическое значение. Ноги бегательные, бедра, особенно передние, иногда сильно утолщены. Лапки 1 - 2-члениковые, с характерной пузыревидной присоской на вершине (Ижевский и др., 1999).

Рис. 1. Морфология яйцекладных трипсов (по Nakahara, 1994): б -- бедро, г -- голень, гщ -- глазковая щетинка, д -- дыхальце, дщ -- дополнительная щетинка, згщ -- заглазная щетинка, зж -- задняя жилка, зк -- заднее крыло, зкг -- заднекрайний гребень, зкщ -- заднек-ра'йняя щетинка, зсп -- заднеспинка, зущ -- заднеугловая щетинка, к - ктенидия, л -- лапка, ощ -- основная щетинка, пг -- простой глазок, пж -- передняя жилка, пк -- переднее крыло, пп -- пузыревидная присоска, псп -- переднеспинка, пт -- плейрит, сг -- сложный глаз, срсп среднеспинка, т -- тергит, у -- усик, щ -- щель.

Крылья в покое складываются плоско на спине. Жилкование крыльев сильно редуцировано. Крылья у представителей семейства Thripidae обычно имеют костальную жилку на переднем крае и 1-- 2 продольные жилки, без поперечных жилок (рис. 1). Задние крылья у яйцекладных трипсов с одной продольной жилкой. Крылья у грубкохвостых трипсов без развитых жилок и щетинок, лишь основание переднего крыла с рудиментом продольной жилки, несущим 2--4 щетинки. Жилки передних крыльев у яйцекладных трипсов с щетинками, число и расположение которых является важным диагностическим признаком. Иногда крылья укорочены до не-нольших чешуек или отсутствуют.

В середине прошлого века Морисоном (Morison, 1957), при детальном изучении фауны трипсов в теплицах Англии, выявлено 42 вида. В дальнейшем количество зарегистрированных видов увеличилось. Виды, отмеченные в теплицах как растительноядные, приведены в таблице 1.

Таблица 1.

Растительноядные виды трипсов, встречающиеся в теплицах

Не все виды в одинаковой степени встречаются на овощных культурах в теплицах. Наиболее часто отмечаются 13 видов из подотряда Terebrantia. Морфологические особенности трипсов подробно описаны в соответствующих методических пособиях, вышедших в последнее время (Великань, 2003; Ахатов и др., 2004), поэтому мы остановимся лишь на их важнейших биологических особенностях и практическом значении.

1.1 Подотряд Terebrantia - Яйцекладные, семейство Thripidae

1.1.1 Подсемейство Нeliothripidae (Panchaetothripidae)

Декоративный, или тепличный полосатый трипс - H. femoralis Reut. встречается в Европе, Северной и Средней Америке, Африке, Азии (Жильцова, Дербенёва, 1972). На территории бывшего СССР был отмечен повсеместно (Дядечко, 1964). В южных районах является вредителем тыквенных, паслёновых и др. культурных растений. В теплицах развивается круглый год (Красавина и др., 2000). Опасный вредитель цветочно-декоративных растений, иногда может переходить на овощные культуры (Ахатов и др., 2004).

В теплицах, по-видимому, может развиваться партеногенетически (Eide, 1943; цит. по Morison, 1957). Самцы встречаются реже самок. Самка откладывает яйца на нижней стороне листа или в молодые стебли. Имаго и личинки на листьях растений живут вместе, образуя колонии, в которых можно встретить и нимфальные стадии, но часть личинок для прохождения следующей фазы развития уходит в почву (Великань, 2003). Преимагинальный период длится 18 дней, имагинальный - около 40 дней. Нимфальные стадии формируются среди растительных остатков. Кроме прямого вреда является переносчиком возбудителей заболеваний растений (Ахатов и др., 2004).

Оранжерейный, или тепличный трипс - H. haemorrhoidalis (рис 2.) в естественных условиях встречается в Испании, Италии, Палестине, Египте, на побережье Кавказа, крайнем юге средней Азии.

В умеренных зонах в оранжереях и теплицах, на комнатных растениях причиняет вред цветочно-декоративным культурам, огурцам, томатам, перцу, баклажанам. На огурец попадает с заселенных декоративных растений, доставляемых из южных районов или ближайших оранжерей (Бондаренко, 1953). При питании имаго и личинок происходит деформация, обесцвечивание или побурение, а иногда и опадение листьев (Жильцова, Дербенёва, 1972).

Зимуют яйца в эпидермисе листьев вечнозелёных растений (Ахатов и др., 2004). Яйца, отложенные последней генерацией трипса осенью в ткань листьев, остаются до весны. Однако, отмечали также зимовку насекомого и во взрослой стадии (Войтенко, 1937).

Откладка яиц начинается через 3-6 дней после выхода самки. Верхний температурный порог развития - около +40^оС, нижний - +12^о-+13^оС. Оптимальная температура для развития - +25^о - +27^оС, относительная влажность воздуха - 85%. Имаго могут жить до 7 недель, но при относительной влажности воздуха 50%, даже при оптимальной температуре происходит массовая гибель личинок, пронимф, нимф (Ахатов и др., 2004). В теплицах Бельгии зарегистрировано 12 поколений в год (Великань, 2003). Среднесуточная плодовитость самок - 2-3 яйца; за жизнь откладывается 25-50 яиц (Oetting et al., 1993). Нимфальные стадии могут проходить как на растении, так и в почве (Великань, 2003).

Драценовый трипс - P. dracaenae (рис. 3) в естественных условиях - обитатель тропиков и субтропиков. Опасный вредитель в теплицах и оранжереях (Ахатов и др., 2004). Вредит монстере, филодендрону, сингониуму, пальмам, инжиру, драценам; отмечено также повреждение огурцов. Встречается на различных комнатных растениях (Жильцова, Дербенёва, 1972). Все стадии развития трипса проходят на листьях, вызывает их обесцвечивание и усыхание. Пронимфы и нимфы остаются в большинстве случаях на листьях. В среднем развивается одна генерация в течение месяца. Самцы редки (Великань, 2003).

1.1.2 Подсемейство Thripinae

Род. Thrips

Табачный трипс - T. tabaci в России впервые в теплицах отмечен П. Зориным в 1934 году. Космополит. В условиях защищённого грунта встречается повсеместно, даже на Крайнем Севере (Галахов, 1945). В хранилищах, при температуре +18^оС, трипсы продолжают питаться и размножаться (Герасимов, 1941).

В природных условиях могут зимовать все фазы развития трипса (Shirsk, 1951). Встречаемость табачного трипса в открытом грунте, в природных стациях обитания в районе Лыкошино Новгородской области, установил ещё О.И. Ион (1930). Возможность зимовки в открытом грунте подтверждается новейшими исследованиями (Великань, Иванова, 2005). До начала 80-х годов был основным видом, вредящим на овощных культурах в теплицах России (Бегляров, Сучалкин, 1985; Сучалкин, 1987; Доброхотов, 1987). Ситуация изменилась в 90-х годах прошлого века, когда этот вид стал вытесняться калифорнийским трипсом (Великань, 1997, 2003; Великань, Иванова, 2002).

В защищённом грунте трипс размножается по типу телитокического партеногенеза - из неоплодотворённых яиц отрождаются самки (Morison, 1957). Оптимальной для развития вредителя является температура в пределах +25^о - +30^оС. При этой температуре у насекомого наблюдаются самые высокие биологические показатели репродуктивного потенциала: выживаемость - 86,7 % и интенсивность откладки яиц - 2,7 яйца в сутки, при продолжительности развития - 11,5-13,7 дней (Бегляров, Сучалкин, 1985). Наиболее благоприятная относительная влажность воздуха 80-85% (Сучалкин, 1987). На огурце численность вредителя за 1 генерацию может возрастать в 70 раз, на сладком перце в 51 раз, на хризантемах - в 38 раз (Попов, Шевченко, 1986).

По данным Н.П. Дядечко (цит. по Акопян, 1975) трипс питается более чем на 400 видах различных растений. На томатах предпочитает заселять листья нижнего яруса, которые по технологии выращивания культуры периодически удаляют. Вследствие этого, численность вредителя заметно снижается, и он не представляет опасности для растения (Великань, Иванова, 1995).

При питании в эпидермис листа вводится пищеварительный секрет, который диффузно распределяется в листьях (Kloft, Ehrhardt, 1959). Групповое питание личинок приводит к отмиранию тканей листа. Повреждение большого количества листьев значительно ухудшает ассимиляцию, что вызывает угнетение растений и снижение урожая (Бондаренко, 1953). Трипс является также переносчиком вирусов растений, что усугубляет его вредоносность в теплицах.

В грунтовых зимних теплицах ангарного типа под стеклом площадью 1000 м², при температуре +20^о -+25^оС, вредитель распределён достаточно равномерно с некоторым преобладанием очагов размножения вдоль центральной дорожки и по периметру (Сучалкин, 1987).

По данным Бинз с соавторами (Byns et al., 1982) вредитель более многочислен на молодых верхушечных листьях, чем на листьях среднего яруса. Ф.А. Сучалкин (1982) утверждает, что на плодоносящих растениях трипс встречается равномерно, за исключением старых и активно растущих листьев.

Розанный, или паслёновый трипс - T. fuscipennis в теплицах, впервые, описан Альбергом в 1924 году (цит. по Morison, 1957). Распространён по всей Голарктике, в России повсеместно. Многояден. Вредит розам, гвоздикам, землянике, томатам, баклажанам, огурцам. Встречается в цветках, почках, листьях, побегах различных трав, кустарников, лиственных деревьев (Красавина и др., 2000).

Морисон (Morison, 1957) наблюдал вредителя на 298 видах растений открытого грунта и в теплицах Шотландии. Трипс откладывает яйца в ткани наружных лепестков цветков, реже листьев. Превращение в нимфальную стадию происходит на внутренней стороне чашелистиков розы или в полых стеблях огурца. В теплицах встречается с мая по сентябрь. Зимует в открытом грунте (Красавина и др., 2000).

В последнее время этот вид всё чаще стал встречаться в закрытом грунте Северо-Запада РФ. В тепличном комбинате ЗАО «Выборжец» его начали отмечать с 1994 года (Великань, Иванова, 2002). В АО им. Тельмана, на огурце, популяция Т fuscipennis составляла 90%, остальные 9% приходились на F. occidentalis и 1% на T. tabaci (Слепко, Утянская, 1996). Также более поздние наблюдения подтвердили наличие T. fuscipennis в теплицах АО им. Тельмана (Великань, Доброхотов, 2005).

Черноволосистый, или хризантемовый трипс - T. nigropilosus распространён по всей Голарктике, Австралии, Гавайях, Фиджи, Кении (Ахатов и др., 2004). В теплицах, впервые, описан Барли в США (цит. по Morison, 1957). Многояден, питается на листьях и цветках (Ахатов и др., 2004).

По данным Жильцовой и Дербенёвой (1972) в СССР как вредитель не зарегистрирован. Чаще начал отмечаться в теплицах с 1980 года прошлого столетия (Markkula, Tiittanen, 1980). Однако, по сравнению с табачным доля розанного и хризантемового трипсов составляла всего 1,6-6,4% (Сучалкин, 1987). В конце 90-х годов хризантемовый трипс встречался во многих сборах сотрудников ВИЗР (Великань, Иванова, 2002). В теплицах не зимует (Великань, Иванова, 2005).

У вида существует несколько форм, отличающихся размерами крыльев, преобладают особи с короткими крыльями (Дядечко, 1964). Имея слабо развитые крылья, трипсы летают плохо, поэтому скорость распространения этого вида в теплицах невелика (Ахатов и др., 2004).

Трипс черноусый - T. atratus изредка встречается в весенне-летний период, проникая в цветочные теплицы из открытого грунта (Ахатов и др., 2004). Иногда может вредить на огурцах (Великань, Иванова, 2005).

Трипс цветочный - T. physapus в теплицах встречается эпизодически в летний период. Обитает в цветках растений семейства астровых. Вредит также растениям из семейства паслёновых и мотыльковых. В теплицах часто повреждает цикламен. Способен переносить заболевания растений. Вредитель заселяет пригодные для питания растения, залетая в весенне-летний период из притепличного пространства (Ахатов и др., 2004).

Гладиолусовый трипс - T. simplex повреждает листья, цветки, луковицы гладиолуса в открытом и закрытом грунте. Может вредить на гвоздике, ирисах, каллах, фрезии, календуле и др. (Великань, 2003; Ахатов и др., 2004). В хранилищах при температуре +10^оС и выше трипсы продолжают питаться и размножаться. В 1984 году имаго этого вредителя обнаружены А.К. Ахатовым в луковицах гладиолусов, полученных частной компанией из Голландии. В 1998 году О.Г. Волковым вид был обнаружен и на материале, присланном из других мест. На овощных культурах закрытого грунта пока не отмечается (Ахатов и др., 2004).

Трипс Пальми - T. Palmi) впервые был описан на острове Суматра в 1921 году. Экономическую значимость приобрёл в конце 70-х годов прошлого века, когда начал вредить на овощных культурах на Филиппинах и в Японии. Из этого региона распространился в Америку, Европу, Африку. В теплицах впервые описан Cузуки и Мийярой в 1980 году (Suzuki, Miyara, 1980). Первое упоминание о появлении в Нидерландах на фикусе относится к 1992 году. По всей Европе считается карантинным объектом (Loomans, Vierbergen, 1997).

В настоящее время встречается в 5 европейских странах - Англия, Нидерланды, Польша, Словакия, Хорватия (Zegula et al., 2004). Однако возможно появление трипса в России на Дальнем Востоке, из Кореи, Японии, Китая. В последнее время отмечается повышение морозоустойчивости трипса, хотя перезимовка происходит при отсутствии устойчивых отрицательных температур (Ахатов и др., 2004).

Ареал трипса Пальми быстро расширяется. Это связано как с проникновением его на новые территории, так и с более точной идентификацией выявляемых трипсов (Волков, 2000).

Вредитель повреждает около 210 видов растений, принадлежащих к 51 семейству. Для имаго и личинок характерны большие скопления и групповое питание вначале на листьях вдоль средней, а потом и других жилок, на стеблях в точках роста, на цветах среди лепестков. Повреждённые участки приобретают серебристый блеск (Совершенова, Левченко, 2004). Снижается рост растений и количество цветков. Переносчик вирусов пятнистостей, увядания томатов и других заболеваний (Ахатов и др., 2004).

Жизненный цикл такой же, как у других представителей семейства Thripidae. В популяции присутствуют как самки, так и самцы. Оптимальная температура для развития вида - +25^о - +30^оС. Продолжительность генерации при этих температурах составляет 20,5 - 24,8 дней (Oetting et al., 1993). Максимальная плодовитость наблюдается при +25^оС - около 60 яиц на самку (Loomans, Vierbergen, 1997). В теплицах может обитать совместно с калифорнийским трипсом, при этом преобладает в большей степени на листьях (Rosenheim et al., 1990).

Род Frankliniella

Род Frankliniella является наиболее многочисленным и разнообразным в тропических и субтропических областях, насчитывает около 150 видов (Иванова и др., 1991).

Калифорнийский трипс - F. occidentalis один из опаснейших вредителей тепличных культур. Впервые, в теплицах, отмечен в США Саки-мурой в 1964 году на томатах. Из Северной Америки, которая является его родиной, в связи с активной торговлей декоративными культурами, распространился по всему свету. В Германии был зафиксирован в 1983 году, а в 1984 году в Нидерландах на розах (Koppert, 1993).

Учёные ВИЗР отметили вредителя сначала в Эстонии, Латвии, Литве. В 1989 году его зарегистрировали в цветочно-карантинном питомнике Невского отделения Объединения «Цветы» г. Санкт-Петербурга (Другова, Нестеров, 2004). Одновременно был обнаружен в разводочной теплице с фитосейулюсом Объединения «Лето» (совхоз «Ленинградский»).

В 1995 году, из обследованных 9 хозяйств Ленинградской области, калифорнийский трипс был обнаружен в 7 на розах, хризантемах и огурцах. Этот вредитель - полифаг, повреждающий 244 вида растений из 62 семейств, но на гвоздиках, томатах, перцах и баклажанах в то время ещё не отмечался (Другова, Шмидт, 1995). Однако, постепенно, вредитель распространялся и на эти виды растений, где вытеснял табачного трипса к концу вегетации растений (Великань, Иванова, 1995). Это объясняется более коротким циклом развития калифорнийского трипса, более высокой плодовитостью и устойчивостью к инсектицидам (Van Rijn, 1999; Поздняков, Чижов, 2003; Поздняков, 2004).

Повреждения, наносимые калифорнийским трипсом, по характеру схожи с табачным. Сначала трипс повреждает листья, затем переходит в бутоны и цветки, где питается пыльцой, выедает содержимое завязи. В результате ткани листа засыхают, бутоны не раскрываются, плоды не завязываются или бывают скрученными. При высокой численности повреждает плоды. На плодах огурца и сладкого перца появляются некрозы, поэтому они переводятся в низшую категорию качества (Shipp et al., 1998, 2000). Кроме непосредственного вреда, причиняемого при питании, переносит вирус пятнистого увядания томатов, или бронзовости томатов (tomato spotted wilt virus; Ахатов и др., 2004).

В численном отношении в теплицах преобладают самки. Самцы в массе встречаются весной и осенью и живут несколько дней. Размножаются трипсы половым и бесполым путём. Обычно неосемененные самки производят самцов, осемененные - дают обоеполое потомство в соотношении приблизительно 1/3 самцов и 2/3 самок (Koppert, 1993). По данным ВИЗР (Великань, 2003) в условиях Северо-Запада самцы калифорнийского трипса встречаются в массе в теплицах в апреле и в июле-августе (Ижевский, 1996; Ижевский и др., 1997).

Яйца самки откладывают в листья, лепестки и мягкие части стебля. На листьях сладкого перца места надрезов вскоре становятся различимы, тогда как на огурцах и других культурах - нет (Koppert, 1993).

При заселении огурца трипс отдает предпочтение среднему и верхнему ярусу, затем расселяется по всему растению. На перце основная масса вредителя концентрируется в цветках. Реже повреждаются томаты, хотя и на них уровень численности этого вредителя бывает высоким, а основная масса насекомых до 83% находится в нижнем ярусе (Слепко, 1993).

На огурцах при температуре +25^оС самки ежедневно откладывают около трёх яиц, но дополнительное питание пыльцой увеличивает плодовитость в 1,7 раза, от 2,7 до 4,7 яиц в день (Rijn, Sabelis, 1995). По другим данным при питании пыльцой сосны (Pinus elliottii Engelm.) плодовитость повышается в 2,9 раза (Riley et al., 2007). Повышение плодовитости при питании пыльцой отмечали и другие исследователи (Hulshof, Vanninen, 1999, 2003; Ижевский, 2005). Одна самка живёт примерно месяц. За это время может отложить 300 яиц (Ахатов и др., 2004).

Массовое развитие вредителя происходит с мая по ноябрь. При температуре +25^о - +30^оС развитие одного поколения происходит в течение 13-14 дней (Lublinkhof, Forster, 1977; Поздняков, Чижов, 2003). В ноябре численность трипса снижается, т.к. основная масса уходит на зимовку. Отдельных особей можно встретить на вегетирующих растениях в течение всей зимы (Красавина и др., 2000). Диапауза у этого вида неизвестна. В отсутствии растений трипсы способны выжить в теплице не более недели (Ахатов и др., 2004). В открытом грунте на территории РФ не зимует (Великань, Иванова, 2005).

Обыкновенный (разноядный) трипс - F. intonsа распространен по всей Палеарктике, в России повсеместно. Часто встречается на пониженных, болотистых участках, с мая по сентябрь, на различных цветущих растениях. Зимует в открытом грунте, откуда залетает в теплицы в апреле-мае месяце. Однако нельзя исключить возможности и полной адаптации к тепличным условиям. Постоянно отмечается в условиях теплиц под плёнкой ЗАО «Выборжец» с середины 90-х годов прошлого столетия (Великань, Иванова, 2005).

Повреждает перец, огурец, баклажан, розу, хризантему, георгин. Яйца откладывает в ткань чашелистиков, листьев и стеблей. Развитие всех стадий этого вида, как правило, происходит на растении. Трипс заселяет в первую очередь цветки, чем опасен для декоративно-цветочных культур. На овощных культурах, напротив, питаясь пыльцой, он невольно участвует в опылении (Красавина и др., 2000).Взрослым особям и личинкам для полноценного развития необходимо кратковременное питание пыльцой. Лишь при этом условии самки откладывают максимум яиц (Ахатов и др., 2004).

На огурце заселяет уже цветущие растения. При достижении средней плотности популяции 15 особей на цветок происходит быстрое расселение этого вида на листья и плоды, которые он сильно повреждает. Поэтому указанную плотность можно считать критической и отправной для проведения защитных мероприятий, причём важно не пропустить начало появления вредителя на листьях (Великань, Иванова, 2002).

На сладком перце сорта Ласточка в ЗАО «Выборжец» отмечено доминирование обыкновенного трипса над калифорнийским в обогреваемых теплицах под плёнкой в первой половине лета (Великань, Доброхотов, 2005). При численности более 7 особей на цветок начинался переход насекомых на плоды, на которых появлялся некроз. Снижался товарный вид продукции, она реализовывалась по более низкой цене.

В некоторых странах вид приобретает статус вредителя в закрытом грунте (Великань, Иванова, 2005).

Бледный трипс - F. pallida в Западной Европе, Азии, а также на территории бывшего СССР, встречается повсеместно. Обычный вид. Зимует в дерне, растительных остатках. Встречается в цветках мотыльковых растений, на льне, клевере, люцерне, картофеле, конских бобах, в цветках плодово-ягодных культур (Дядечко, 1964; Жильцова, Дербенёва, 1972).

Как вредитель огурца впервые отмечен в теплицах Германии (Albert et al., 1989). Однако, как вредитель, в теплицах довольно редок. Может переносить вирусные болезни растений.

Род Echinothrips

Эхинотрипс американский - E. americanus в природных условиях встречается на юге Канады, на востоке США, в Мексике, на островах Карибского бассейна. В начале 1990-х годов был занесён в Западную Европу, где обосновался, и обитает чаще в теплицах. В 2005 году обнаружен в России, в теплицах Ботанического сада БИН РАН г. Санкт-Петербурга (Другова, Варфоломеева, 2006; Клишина, Великань, 2007). Непродолжительное время может переносить нулевую температуру. Диапауза у этого вида не установлена.

Продолжительность развития трипса уменьшается с увеличением температуры. При температуре +20^оС от яйца до имаго проходит 33,9 дней, при +30^оС - 11,4 дня (Oetting et al., 1993). Самки живут до 40 дней. Средняя плодовитость - 75-80 яиц.

Может питаться на 100 видах растений более чем из 20 семейств. В теплицах США развивается на хризантеме, пуансеттии, огурце, перце, томате. Симптомы повреждений растений схожи с другими видами трипсов. Начинает заселять растения с нижних листьев. Взрослые особи летают плохо, поэтому первичное заселение носит очаговый характер.

Яйца откладывает в ткань листа. На нижней стороне листа в местах откладки яиц образуются вздутия. Личинки, как и взрослые особи, питаются на листьях, переходя, при высокой плотности популяции, на цветки и плоды. Характерной особенностью трипса является то, что пронимфы и нимфы развиваются на растении (Ахатов и др., 2004).

1.2 Подотряд Tubulifera - трубкохвостные трипсы

В литературе описано 4 вида трубкохвостых трипсов из семейства Phleothripidae, которые могут вредить в теплицах. Три из них представлены в обзоре Морисона (Morison, 1957). Это виды H. subterraneus, A. fasciapennius, L. vaneeckei. Наиболее часто встречается луковичный трипс - L. vaneeckei. Распространён в Европе, Северной и Восточной Азии, Северной Америке. В России обнаружен в Европейской части и в Приморье (Ахатов и др., 2004). Узкий олигофаг. Повреждает различные сорта культурных лилий, с которыми и распространяется очень широко (Великань, 2003). Живёт между чешуйками луковиц. Повреждённые луковицы усыхают и подгнивают. В теплицах встречается на луке (Ахатов и др., 2004). На вегетирующих растениях трипс переходит на листья, вызывая их скручивание (Великань, 2003).

Haplothrips sp. отмечен однажды в теплицах Крыма (Славгородская-Куприева, Жалнина, 1983). Других источников информации, указывающих на появление этого вида в теплицах, в литературе мы не нашли.

В незначительных количествах в теплицах встречаются другие местные виды, случайно попадающие в них во время миграций или с потоками воздуха, не представляющие потенциальной опасности для тепличных культур. Это такие виды как O. aiugae, A. obscurus, L. denticornis, C. manicatus (Великань, Иванова, 2005).

Общая закономерность формирования фауны трипсов в теплицах изучалась В.С. Великань. Она отметила следующее. В оранжереях России вначале вредили три вида трипсов H. haemorrhoidalis, H. femoralis, P. dracaenae. Позже, в период становления промышленного овощеводства и цветоводства, статус экономически значимых видов для тепличных экосистем приобрёл H. haemorrhoidalis и T. tabaci, с преобладанием последнего. В начале 90-х годов был завезён F. occidentalis, который быстро занял лидирующее положение и расселился по европейской части России.

Однако, анализ фитосанитарной ситуации тепличных экосистем последнего десятилетия показывает, что такие виды, как F. intonsa, T. fuscipen-nis, T. nigropilosus также становятся вредоносными и требуют проведения целевых мер борьбы (Великань, 1997; Великань, Иванова, 2002, 2005). В некоторых случаях они полностью вытесняют табачного трипса на овощных культурах или в теплицах существуют комплексы популяций трипсов (Великань, Иванова, 2005). Та же закономерность отмечается в оранжереях ботанических садов (Варфоломеева, 2003).

1.3 Вредоносность трипсов

Около половины всех известных трипсов питаются растениями. Несколько сотен видов сильно вредят различным культурным растениям. Они высасывают соки из листьев, цветков и плодов, являются переносчиками вирусов, загрязняют растения своими выделениями.

В настоящее время трипсы всюду в мире приобретают значение основных, наиболее опасных вредителей растений (Parker et al., 1993). Это касается как открытого, так и закрытого грунта. Причин этому несколько. Здесь и интенсивный рост межгосударственных торговых отношений, с чем связана вероятность межконтинентальных переносов этих мелких насекомых. И резко возросшая устойчивость трипсов к основным применяющимся против них пестицидам. И, наконец - особенности их биологии.

Для многих трипсов характерно групповое развитие личинок и скрытный образ жизни. Они могут группироваться (агрегироваться) на одном листе растения или на одном растении среди целой их группы. Этим обусловлена трудность обнаружения первых их очагов в теплице. Трипсы довольно быстро вырабатывают устойчивость к пестицидам на видовом и популяционном уровне. Это создает осложнения при организации химической борьбы и вызывает необходимость поиска альтернативных методов подавления их численности (Ижевский и др., 1999).

Из всех трипсов в теплицах до недавнего времени наиболее массовым и вредоносным был табачный трипе. В последние годы все большее распространение получает западный цветочный трипе. Он имеет несколько рас, различающихся но агрессивности и вредоносности. Особенно опасен он для цветочных культур. На огурце и перце оба эти вида способны образовывать смешанные популяции.

Возрастает вредоносность розанного трипса, который кроме основного своего кормового растения - розы, сильно вредит огурцам. Многие декоративные культуры часто повреждаются комплексом видов, обитающих в оранжереях: драценовым, декоративным и оранжерейным (Strassen, 1988).

До заноса в Европу из Нового Света западного цветочного трипса представители этого отряда не включались в Перечни карантинных объектов. В настоящее время в Перечень карантинных объектов ЕОЗР включено уже 4 вида трипсов: 3 из них - вредители цитрусовых, четвертый - многоядный трипе Пальми, повреждающий овощные и декоративные растения. В России в ранге карантинных находятся 2 вида: трипс Пальми и западный цветочный трипс (Ижевский и др., 1999).

Основным требованием для карантинной службы является быстрое и правильное определение объекта. В отношении трипсов время определения часто очень ограничено, поскольку при этом возникает необходимость осмотра и задержки такого деликатного груза как срезанные цветы. Личинок трипсов часто путают с коллемболами, а имаго с мелкими стафилинидами. Оба эти таксона имеют мелких представителей и потому их легко спутать с трипсами. Определение насекомых возможно только по имаго (Дядечко, 1964).

В справочнике Ижевского с соавторами (1999) описано 14 видов трипсов, в той или иной мере опасных для растений, выращиваемых в защищенном грунте. В плане вредоносности для тепличных и оранжерейных культур, они разделены на следующие 3 группы:

I. Особо опасные трипсы (в теплицах России наносят растениям существенный вред):

Frankliniella intonsa - разноядный.

2. Frankliniella occidentalis - западный цветочный, или калифорнийский.

3. Heliothrips haemorrhoidalis - оранжерейный, или тепличный.

4. Hercinothrips femoralis - декоративный.

5. Liothrips vaneeckei - луковичный.

6. Parthenothrips dracaenae - драценовый.

Thrips atratus - черноусый.

Thrips fuscipennis - розанный, или пасленовый.

Thrips nigropilosus - черноволосистый.

Thrips physapus - цветочный.

Thrips tabaci -- табачный.

Thrips vulgatissimus - обыкновенный.

II. Второстепенные трипсы (отмечены на растениях в теплицах и оранжереях Европы, в том числе и в России, но вредят редко и локально):

1. Chaetanaphothrips orchidii - орхидейный.

III. Отсутствующие в России трипсы, но вредящие в соседних регионах:

1. Thripspalmi -- трипс Пальми

1.4 Меры борьбы с трипсами

1.4.1 Агротехнические меры

Наибольшее внимание следует уделять профилактическим мерам, предотвращающим проникновение трипсов в теплицы. Эти меры хорошо известны, но, к сожалению, не всегда используются. К ним относят:

тщательное обследование и обеззараживание поступающих в теплицы растений, инвентаря и субстратов;

уничтожение резерватов трипсов на сорных и декоративных растениях;

использование мелкоячеистой сетки для закрытия вентиляционных отверстий, дверных, оконных и прочих проемов, укрытие самих растений и др.

Следует помнить, что многие сорные растения произрастают не только на грядках среди культур, но и под стеллажами, в щелях между бетоном и кирпичной кладкой, а потому могут быть не замеченными. Сорные растения возле оранжерей и теплиц весной развиваются значительно раньше, чем на удаленных от них участках, и в первую очередь заселяются вышедшими из зимовки вредителями. Именно на них трипсы переходят летом (когда температура в теплицах превышает оптимальные для развития насекомых значения), а осенью возвращаются с них в теплицы, способствуя образованию обновленных, более гетерогенных тепличных популяций, обладающих повышенной жизнестойкостью.

Предотвращению массового размножения трипсов в случае их проникновения в теплицы служат различные агротехнические приемы: подбор устойчивых к повреждениям трипсами видов и сортов, рациональный режим полива и подкормки растений, поддержание оптимального гигротермического режима в теплице и пр.

Для своевременного обнаружения трипсов в теплицах, помимо регулярного обследования растений, используют клеевые ловушки, которые размещают у вентиляционных отверстий, дверей, в коридорах и непосредственно над растениями. Если вредитель обосновался в теплице, клеевые ловушки можно использовать для слежения за изменениями его численности, а также для массового отлова взрослых особей. В некоторых случаях известны запаховые приманки, увеличивающие уловистость ловушек. Такими аттрак-тантами являются, например, эвгенол и гераниол (Ижевский и др., 1999).

1.4.2 Химический метод

Как правило, против трипсов эффективны высокотоксичные препараты, которые плохо сочетаются с применением полезных организмов. Из пестицидов, рекомендованных для закрытого грунта против трипсов, на огурцах, томатах и перцах пригодны актеллик, арриво, пегас и талстар. На декоративных культурах также используют эвисект и вертимек. Для успешной борьбы с трипсами необходимо обрабатывать растения как минимум дважды с интервалом в 7--10 дней в зависимости от вида вредителя и температуры в теплицах. Пестициды более эффективны против табачного, чем против западного цветочного трипса. Это различие связывают с образом жизни видов и их чувствительностью к препаратам (Ижевский и др., 1999).

1.4.3 Биологические средства

Для борьбы с трипсами широко применяют хищных клещей: Ambly-seius cucumeris, A. barkeri, A. degenerans, хищных клопов Orius laevigatus, O. majusculus, O. albidipennis, a также биопрепараты на основе энтомопатогенных грибов Verticilliит lecanii, Beauveria bassiana, Paecilomyces fumosoroseum и др. (Сучалкин, 1983; 1989; Шевченко, 1984; 1991;1992; Акимов, Колодочка, 1991; Миронова, 1996).

1.5 Хищный клещ Amblyseius cucumeris

В связи с тем, что объектом нашего исследования был Amblyseius cucu-meris Oud., остановимся более подробно именно на его описании.

A. cucumeris относится к семейству отряду Parasitiformis, надкагорты Mesostigmata, кагорты Gamasina, cемейства Phytoseiidae.

A. cucumeris распространен во многих странах мира. Стал широко применяться в биологической защите тепличных растений после того, как широко распространился западный цветочный трипс (Бегляров, Сучалкин, 1983).

Виды-мишени. Применяют в основном против трипсов, в том числе западного цветочного. Охотно поедает и различных растительноядных клещей.

Биология. Жизненный цикл состоит из пяти стадий: яйца, личинки, двух нимфальных стадий и имаго Самки откладывают яйца на волоски листьев, вдоль жилок с нижней стороны. Они имеют овальную форму и размер прмерно 0,14 мм, белого цвета. У личинки 3 пары ног, в отличие от нимф и имаго, у которых их 4 пары. Прото- и дейтонимфы очень подвижны и активно хищничают. В отличие от хищных клещей, специализирующихся на питании паутинными клещами, они имеют более короткие ноги.

Хищник - олигофаг: питается многими видами трипсов (табачным, земляничным, западным цветочным и др). Может развиваться, питаясь и мелкими акаровыми клещами (в частности, Tyrophagus putrescentiae) и мучным клещом Acarusfarris. На последнем его обычно и разводят. Питается также паутинными клещами, пыльцой различных растений. Последнее обстоятельство делает его особенно эффективным на сладком перце, цветки которого дают обилие пыльцы. При смешанном питании повышается его жизнеспособность и продолжительность жизни.

На томате мало эффективен, поскольку передвижение его затрудняет опушенность листьев и стеблей. На огурце 'работает' только при очень высокой численности трипса, что часто уже не позволяет добиться хорошего защитного эффекта (Ижевский и др., 1999).

Подобно основным своим жертвам - трипсам предпочитает для обитания не большие ниши, где быстро, не затрачивая дополнительно время на поиски, находит их. Важной особенностью биологии амблисейуса с точки зрения практического применения в биологической борьбе является то, что питается он преимущественно личинками трипсов первого возраста. Личинки второго возраста из-за больших размеров и агрессивности отвергаются хищником. Обладает высоким потенциалом размножения: в отрубях на мучном клеще при +25°С и влажности субстрата 17% плотность популяции хищника за 2 недели возрастает с 5 до 60 самок в 1 см³ субстрата.

По данным Ю.И. Мешкова (2000) преимагинальный и репродуктивный период развития у A. cucumeris при +25°С и питании паутинным клещом составляет, соответственно, 10 и 35 дней, смертность за весь период - 58,9 %, плодовитость -- около 32 яиц (см. также табл. 2). При фотопериоде (день : ночь) 11:13 и постоянной дневной температуре +22°С, а ночной +12°С все взрослые особи уходят в диапаузу. Уход в диапаузу можно предотвратить, повысив ночную температуру до +15 - +18°С. Существуют специально выведенные бездиапаузные линии A. cucumeris.

Таблица 2. Влияние температуры на развитие Amblyseius cucumeris

(по Сучалкину, 1987)

Яйца клеща чувствительны к низкой влажности воздуха, которая бывает в теплицах в разгар летней жары и зимой при внешних отрицательных температурах. В таких условиях они в массе погибают (Ижевский и др., 1999).

Способы применения. Этот вид амблисейуса эффективен против табачного и западного цветочного трипсов при выпусках в начальном соотношении с жертвой 1:1 (на табачном трипсе хороший эффект достигается и при начальном соотношении 1:3). Применение А. cucumeris более предпочтительно при температурах до +25°. Весеннее заселение хищником пораженных трипсом растений эффективнее летнего. Зимой клещ, при коротком дне уходит в диапаузу, что существенно снижает его эффективность.

Основное условие успеха применения амблисейуса на огурце - раннее выявление первичных очагов трипсов и выпуск хищника в количестве не менее 5 самок на один лист. На молодом растении это составляет 60-80 самок, на взрослом -- 200 - 250. Выпуски можно проводить, либо развешивая на растениях обрезки материи, снятые с горловин банок, где хищник разводится, либо в бумажных пакетах с небольшим количеством субстрата, содержащим амблисейуса и мучного клеща. Такие пакеты развешивают среди колоний трипса (Ахатов и др., 2004).

Фирма 'Koppert' рекомендует выпускать клещей на огурце для профилактики в норме 50 особей на 1 м² раз в 2 недели. При низкой плотности трипса норму увеличивают в 2 раза, при высокой - интервал между выпусками сокращают до одной недели.

Следует учитывать привлекательность для клещей пыльцы. На цветущем перце выпуски хищника можно начинать до появления трипса: клещ способен долго жить, питаясь одной пыльцой. На огурце получить хороший эффект удается путем дополнительного внесения вместе с клещом цветочной пыльцы (особенно -- на партенокарпических гибридах; Ижевский и др., 1999).

2. Экспериментальная часть

клещ теплица трипс агротехнический amblyseius cucumeris

2.2 Условия проведения экспериментов, материал и методы

2.1.1 Условия проведения экспериментов

Исследования проводили в промышленных теплицах ЗАО «Выборжец» в весенне-летний период 2007 года на огурце сорта Media, выращиваемого в крупноблочных стеклянных теплицах на гродане (бригада № 4, теплица № 10, общей площадью 1,5 га). Температура и влажность воздуха в теплицах контролировались компьютером. При увеличении температуры выше заданного предела автоматически открывались форточки. Полив растений также проводился автоматически, в зависимости от поступления солнечной энергии. Еженедельно проводились внекорневые подкормки растений 0,2%-ной мочевиной, с добавлением микроэлементов, а также углекислым газом.

Эксперименты пришлось проводить на фоне химической борьбы с трипсами, проведенной по всей теплице. 7 июня и 17 июля были проведены опрыскивания растений 0,1%-ным раствором препарата вертимек. 18 июня через систему капельного полива и подкормки был внесен препарат актара в концентрации 0,04%, из расчета 150 мл раствора на кубик (1,68 кг на гектар).

2.1.2. Разведение клещей

Хищного клеща разводили в Биолаборатории ФГУ «ФГТ СТАЗР по Санкт-Петербургу и Ленинградской области» на мучном клеще (Acarus siro L.) в субстрате отрубей по следующей схеме:

1. Термическое обеззараживание отрубей. Прогревание отрубей проводили в сушильном шкафу-термостате марки 2В-151, производства Одесского завода медицинского оборудования, вмещающего три 3-х литровых банки в горизонтальном положении. Банки полностью заполняли отрубями. Горловины банок закрывали полиэтиленовыми крышками, чтобы не терялась влажность отрубей за счёт испарения. Обычно прогревали сразу 10 л отрубей в течение 2,5 часов при температуре +85^оС.

2. Увлажнение отрубей. Экспериментально установлено, что при разведении мучного клеща и амблисейуса в условиях 95-100%-ной влажности воздуха, отруби впитывают воду из воздуха, в результате влажность отрубей повышается на 0,5-0,7% в среднем за сутки. При разведении мучного клеща в течение 3-х недель, влажность воздуха увеличивается в 1,6- 1,9 раза, с 17% до 27,5-31,7%. Смешивая 4 части чистых, прогретых отрубей, имеющих влажность 13%, с 1 частью отрубей влажностью 27,5-31,7% мы получали среднюю влажность отрубей 15,8-16,9%, которая уже пригодна для размножения мучного клеща. В дальнейшем влажность отрубей повышалась за счёт впитывания ими воды из влажного воздуха садков.

Поэтому увлажнение субстрата делали лишь в начальный период работы по разведению мучного клеща, когда объём отрубей в конвейере увеличивался в несколько раз, за счёт включения в работу новых садков. Увлажнение отрубей проводили на полиэтиленовой плёнке, располагая их слоем 2-3 см и опрыскивая из распылителя. Для равномерного увлажнения отруби дополнительно перетирали между ладонями рук.

3. Разведение мучного клеща проводили в кюветах Общее количество кювет делили на 6 частей, получали количество ёмкостей, с которых единовременно собирали мучного клеща для производства амблисейуса. Пропорции смешивания чистых отрубей с отрубями маточной культуры мучного клеща было 4:1. Обычно на воспроизводство в садке оставляли 20 % отрубей, к которым добавляли чистые, прогретые отруби. Таким образом, в кюветах, при толщине слоя отрубей 5 см, на воспроизводство оставляли 900 см³ отрубей с мучным клещом, которые смешивали с 3600 см³ свежих отрубей. Исходная плотность популяции мучного клеща была 400-600 особей в 1 см³. Через 3 недели, при температуре +22^о - +24^оС, плотность популяции мучного клеща достигала 3,0 - 4,0 тысячи особей в 1 см³. Отруби перемешивали, открывая крышки поддонов, 2 раза в неделю.

4. Разведение амблисейуса проводили в тех же разводочных ёмкостях сразу смешивая 6-7 частей чистых прогретых отрубей, с 2-3 частями отрубей с мучным клещом, и 1 частью отрубей с амблисейусом, которого обычно оставляли в кюветах на воспроизводство. При высоте слоя отрубей в кюветах 5 см брали 2700-3150 см³ прогретых отрубей и 900-1350 см³ отрубей из маточника мучного клеща и 450 см³ отрубей с амблисейусом. Исходная плотность популяции амблисейуса - 5-10 особей в см³. Отруби перемешивали, открывая крышки, 2 раза в неделю. Через 3 недели плотность популяции A. cucumeris достигала 50-100 особей в см³. При расчёте конвейера для разведения A. cucumeris общее число садков делили на 6 частей. Получали количество ёмкостей, с которых можно делать сбор хищника каждый раз, при 2-х разовом сборе в неделю.

2.1.3 Выпуски и учеты

Опыт проводили в двух смежных рядках огурца на площади 20 м². Площадь каждого участка 5 м², по 10 растений. 10 июня под каждое растение огурца в одном из рядков на кубик (рис. 9 и 10) положили с помощью чайной ложки по 8 см³ отрубей с хищным клещом, или приблизительно по 200 особей на растение. Во втором рядке выпуск амблисейусов провели путем разбрасывания отрубей по листьям верхнего яруса растений огурца, также из расчета ~ 200 экземпляров на растение. На контрольных участках хищных клещей не выпускали.

Выпуск хищных клещей под растения огурца путем внесения субстрата (отрубей) на гродановый кубик (из Доброхотов, 2008)

Учет численности западного цветочного трипса (личинки и имаго отдельно) и хищных клещей проводили с интервалом 5-7 дней, как правило, на 20 листьях верхнего яруса, т.к. на нижнем и среднем ярусах развитых листьев было очень мало. Кроме того, учитывали численность имаго трипса на 5-10 цветках огурца, а также плотность популяции амблисейуса в 1 см³ отрубей, разложенных под растения огурца.

Сравнение плотности популяций трипс и хищного клеща в отдельных вариантах опытов проводили по средним значениям их численности на лист или цветок. Кроме того, сравнение проводили по биологической эффективности разных видов хищных клещей (с учетом и без учета исходной плотности трипса на участке), а также по изменениям численности трипса, которые рассчитывали по формулам:

БЭ₁=100%; БЭ₂=100%; ИЧ= или

где: БЭ₁ - биологическая эффективность с учетом исходной численности трипса (%);

БЭ₂ - биологическая эффективность без учета исходной численности трипса (%);

ИЧ - изменение численности в опыте или в контроле (раз);

a - исходная численность трипса в контрольном варианте (экз./лист) на дату выпуска клещей;

b - тоже в опытном варианте;

A_i - тоже в контрольном варианте на дату (i) учета;

B_i - тоже в опытном варианте на дату (i) учета.

О статистической достоверности различий отдельных значений судили по критерию Стьюдента (Урбах, 1964).

2.2 Результаты и обсуждение

2.2.1 Оценка влияния двух способов выпуска Amblyseius cucumeris на численность западного цветочного трипса

В связи с неравномерностью распределения трипсов по отдельным растениям и листьям, в первую очередь мы провели сравнение средней их численности на двух контрольных участках (по 10 растений в каждом рядке). Ни по одной дате учетов, как по личинкам, так и по имаго трипса, достоверных различий выявлено не было (Приложение I). Поэтому результаты учетов в контрольных вариантах были объединены и представлены в таблице 3.

Таблица 3. Средняя численность западного цветочного трипса и заселенность листьев в контрольных вариантах по датам учетов на растениях огурца (сорт Media) в теплицах ЗАО «Выборжец» (Ленинградская область, 2007 г.)

Как видно из таблицы 3, проведенные в хозяйстве мероприятия, по борьбе с трипсом с помощью химических средств, не смогли решить проблему. Особенно малоэффективной оказалась обработка препаратом актара. После её проведения (18.06) плотность популяции трипса продолжала возрастать и, к моменту второго опрыскивания вертимеком, увеличилась почти в 10 раз. Обработка вертимеком (17.07) оказалась гораздо более эффективной, особенно в отношении снижения численности личинок трипса, но, тем не менее, не смогла снизить плотность вредителя даже до исходного уровня (на 10.06). Результаты учетов численности трипсов и хищных клещей по отдельным листьям, в варианте с выпуском A.cucumeris методом разбрасывания и методом замедленного выпуска при внесении на гродановый кубик представлены в приложениях II и III, а усредненные результаты в таблицах 4 и 5, соответственно.

Таблица 4. Средняя численность западного цветочного трипса и A. cucumeris в разные сроки после выпусков хищника методом разбрасывания

(ЗАО «Выборжец», 2007 г.)

Эти данные показывают, что более эффективным, чем использование химических средств, для борьбы с трипсом оказалось использование хищного клеща A. cucumeris. Однако, следует отметить, что большая неравномерность распределения западного цветочного трипса и хищных клещей на растениях огурца существенно затрудняла выявление закономерностей при сравнении отдельных вариантов опытов. В некоторых случаях, несмотря на 2-х - 3-х кратное различие средних значений плотности трипса, их достоверность доказать не удается. Это позволяет сделать методическое заключение о желательности использования большего числа учетных единиц (более 20 листьев) при проведении аналогичных исследований.

Таблица 5. Средняя численность западного цветочного трипса и A. cucumeris в разные сроки после выпусков хищника на гродановый кубик

(ЗАО «Выборжец», 2007 г.)

Тем не менее, через неделю после начала эксперимента при выпуске A. cucumeris способом разбрасывания плотность трипса снизилась более чем в 4 раза, но при замедленном выпуске эффективность оказалась значительно ниже и плотность трипса достоверно не отличалась от контрольной

Наиболее ярко эффективность способа разбрасывания амблисейуса на листья огурца проявилась спустя 2 недели после начала эксперимента, когда плотность западного цветочного трипса в контроле возросла почти в 5 раз, по сравнению с исходной (К этому времени и в варианте с выпуском на кубик амблисейус уже хорошо «работал» и плотность трипса на листьях огурца в обоих опытных вариантах достоверно не отличалась.

Рис. 11. Динамика численности западного цветочного трипса на листьях огурца при двух способах выпуска A. cucumeris и в контроле (заливкой обозначены значения, достоверно отличающиеся от контроля)

Различия между способами выпусков хищных клещей отчетливо проявляются на протяжении вторых двух недель от начала эксперимента. В этот период, когда в контроле численность трипса возрастает уже в 6-7 раз, по сравнению с исходной (табл. 3), хищные клещи, выпущенные способом разбрасывания, уже не в состоянии сдерживать рост численности вредителя (табл. 4, рис. 11), что соответствует литературным данным и рекомендациям для повторных выпусков (Ravensberg et.al., 1992; Ижевский и др., 1999). При замедленном выпуске A.cucumeris на 1.07 плотность трипса на листьях огурца остается на низком уровне и до 9.07 практически не превышает исходную Это определяется в целом большей плотностью хищных клещей на листьях огурца, в варианте, с замедленным выпуском, наблюдаемой в этот период

Рис. 12. Динамика численности A.cucumeris на листьях огурца при разных способах его выпуска (заливкой обозначены достоверно отличающиеся значения)

Вероятно, спустя 2 недели следовало провести повторный выпуск амблисейуса методом разбрасывания, т.к. к 3-ей неделе и в опытном варианте численность трипса начинает возрастать, а соотношение хищник : жертва существенно снижаться При замедленном выпуске, эту процедуру можно проводить через месяц, так как заметный рост плотности трипсов и снижение хищных клещей начинается только спустя 5 недель после первого выпуска (табл. 5, рис. 11 и 12). Особенно высокий рост плотности трипса (до 40 особей на лист) в контрольных вариантах заставил работников хозяйства провести 3-ий циклы химических обработок (второе опрыскивание препаратом вертимек) против западного цветочного трипса. Обработки оказались эффективными, но не на 100% (см. выше).

Опрыскивание (17.07) препаратом вертимек в 0,1 % концентрации вызвало почти 100%-ную гибель амблисейусов на листьях огурца. Поэтому были проведены повторные выпуски хищного клеща разбрасыванием и замедленным способом. Это привело к сдерживанию роста численности трипса .В контроле численность трипса стала увеличиваться Важными показателями экономической опасности вредителя на культуре огурца является процент заселенных им листьев и присутствия на них энтомофагов. Мы провели такой анализ .Его результат послужил основанием для принятия решений о проведение химических обработок и повторного выпуска хищных клещей.

Таблица 6. Заселенность листьев огурца западным цветочным трипсом и хищным клещом A.cucumeris в разные сроки после внесения субстрата под растения (ЗАО «Выборжец», 2007 г.)

Frankliniella occidentalis на зря называется западным цветочным трипсом. Его личинки и имаго активно питаются в цветках заселяемых растений, что вызывает дополнительные трудности для химического метода борьбы с этим вредителем. Поэтому, мы и провели оценку плотности трипсов, встречающихся в цветках растений огурца в вариантах с разными способами выпуска A.cucumeris и в контроле. Данные отдельных учетов представлены в приложениях VIII - X, а усредненные результаты в таблице

Таблица 7. Средняя численность западного цветочного трипса в цветках огурца и их заселенность при выпуске двух вариантах выпуска A.cucumeris

Как видно из представленных материалов, при учете численности калифорнийского трипса в цветках огурца, в целом, по динамике ее изменения и заселенности цветков, отмечаются те же тенденции, что и при их учете на листьях ) Однако, в силу большой изменчивости достоверность различий удается доказать только в отдельных случаях.

Так, через 3 и 4 недели после выпуска A. cucumeris на градановый кубик (1.07 и 9.07) средняя численность трипсов в цветках была в 3 и в 2,7 раза меньше, чем в соответствующих вариантах при выпуске методом разбрасывания, и, соответственно, в 2,9 и 4,6 раза меньше чем в контроле. Последние различия статистически достоверны, в отличие от всех остальных вариантов оценки численности, при попарном сравнении значений в опытных и контрольном вариантах на данную дату учета. В отношении процента заселенных цветков достоверные различия удалось доказать только на одну дату учетов (9.07) для варианта с выпуском A. cucumeris на кубик и контролем.

Рис. 13. Динамика численности западного цветочного трипса в цветках огурца при разных способах выпуска A. cucumeris

(заливкой обозначены значения, достоверно отличающиеся от контроля)

2.2.2 Сравнение эффективности двух способов выпуска Amblyseius cucumeris для борьбы с западным цветочным трипсом на огурце

Следует отметить, что для проведения экспериментов нам удалось подобрать участки (как для опытов по выпуску хищных клещей, так и для контроля), на которых плотность популяции трипса (как личинок, так и имаго) в начале эксперимента достоверно не отличалась. Это дало нам основания для дополнительного расчета биологической эффективности использования хищных клещей против трипса без учета исходной плотности вредителя. Более простая формула для ее вычисления (см. 2.1.3) позволяет рассчитать этот показатель с большей точностью, точнее с меньшей статистической ошибкой. Это, в свою очередь, позволяет в большем числе случаев и с большей вероятностью доказать достоверность показателя биологической эффективности проведенных мероприятий по выпускам хищных клещей (табл. 8).

Таблица 8. Изменение численности западного цветочного трипс на листьях огурца и биологическая эффективность двух вариантов выпуска A. cucumeris для борьбы с вредителем

Как видно из таблицы 8 и соответствующего ей при выпуске A. cucumeris методом разбрасывания хищный клещ начинает проявлять высокую биологическую эффективность (85-95%) сражу же после выпуска. При его выпуске на кубик наблюдается определенное отставание. Однако, через 2 недели после начала эксперимента биологическая эффективность сопоставляемых методов выпуска практически выравнивается, а в последующие 3 недели преимущество замедленного выпуска проявляется очень ярко. Складывается впечатление, что при замедленном выпуске A. cucumeris медленнее начинает, но существенно дольше и надежнее контролирует рост численности западного цветочного трипса на листьях огурца, по крайней мере в течение месяца или даже 5-ти недель после внесения субстрата на кубик.

Рис. 14. Динамика биологической эффективности разных способов выпуска A. cucumeris для борьбы с западным цветочным трипсом на листьях огурца

(заливкой обозначены значения, достоверно отличающиеся от нуля)

Также очевидно, что для эффективной борьбы с западным цветочным трипсом путем замедленного выпуска A. cucumeris через месяц после первого внесения субстрата, его надо повторять. При использовании метода разбрасывания отрубей с хищным клещом повторные выпуски нужно делать гораздо раньше (через 2 недели), что в 2 раза повышает затраты на осуществление биологической борьбы.

На наш взгляд это связано с тем, что при выпуске разбрасыванием хищные клещи сразу начинают искать жертвы на листьях огурца, но уничтожив наиболее доступную стадию жертвы - личинки 1-го возраста, начинает покидать растения в поисках других жертв, или гибнет, не успев размножиться. При замедленном выпуске A. cucumeris начинает покидать субстрат, подниматься по стеблю огурца и распространяться на листья в поисках жертв несколько позже, однако, продолжает размножаться в субстрате на мучном клеще более длительное время, что обеспечивает дополнительную миграцию хищного клеща на растения огурца в более поздние сроки. Вероятно, замедленный выпуск хищных клещей больше соответствует динамике роста и развития вредителя, что позволяет более длительное время и более надежно контролировать его численность.

По нашим наблюдениям а A. cucumeris при выпуске на кубик, сохранялся в кучках отрубей в течение 6-ти недель. Эти результаты оказались близки к результатам, полученным Рамакерсом, в отношении использования A. cucumeris на перце, который отмечал хищника в отрубях в течение 7-ми недель (Ramakers, 1990).

Рис. 15. Динамика численности A. cucumeris в субстрате, после его внесения на гродановый кубик

3. Экономическая эффективность использования двух способов выпуска хищного клеща Amblyseius cucumeris для биологической борьбы с западным цветочным трипсом

По результатам исследований мы рассчитали экономическую эффективность использования двух способов выпуска хищных клещей для биологической борьбы с западным цветочным трипсом.

Оценку экономической эффективности производили на основе сопоставления вариантов с применением энтомофагов и вариантов с химическими обработками, т.к. чистого контроля (варианты без применения средств защиты растений) в хозяйстве не было (Кольцов, Черкасов, 1981).

Затраты на защиту растений складываются из: затрат на производство энтомофагов, приобретение инсектицидов, биопрепаратов и т. д.; стоимости внесения препаратов (выпуска энтомофагов); транспортных расходов; затрат на уборку, послеуборочную обработку, хранение, перевозку и реализацию дополнительного урожая; накладных расходов (Макарец, 2005).

3.1 Расчёт себестоимости производства амблисейуса в биолаборатории ФГУ «ФГТ Ленинградская СТАЗР» в 2007 году

1. Заработная плата сотрудников с начислениями (35,5%) - 283200,0 руб.

2. Износ основных средств - 3890 руб.

3. Стоимость малоценного инвентаря - 862 руб.

4. Сырье и материалы - 1000 руб.

5. Износ на здание - 10695 руб. Площадь лабораторного корпуса - 1425 м². Биолаборатория располагается на площади 110 м². В расчете на 110 м² износ составит 825,6 руб.

6. Износ на гараж - 13318 руб. В расчете на биолабораторию приходится 160 руб.

7. Износ на теплицы - 9025 руб., а в расчете на 1 теплицу - 3008 руб.

8. Коммунальные услуги:

а) электроэнергия - 125000 руб., на биолабораторию приходится 1/5 часть или 25000 руб.

б) холодная вода - 4000 руб., на биолабораторию приходится 1/4 часть или 1000 руб.

9. Расходы на автотранспорт, приходящиеся на биолабораторию - 400 руб.

10. Общая сумма прямых затрат - 319 346 руб.

11. Накладные расходы - 30% или 95804 руб.

Общая сумма затрат 319346 + 95804 = 415,15 тыс.руб.

В 2007 году разводилось 5 энтомофагов. В расчете на 1 вид пришлось: 415,15:5 = 83030 руб.

Себестоимость 1000 особей находится делением суммы затрат, приходящейся на 1 вид энтомофага, на объем производства (15 млн. особей) и она составила: 83030:15000 = 5 руб. 54 коп.

3.2 Расчет экономической эффективности применения двух способов выпуска Amblyseius cucumeris в борьбе с западным цветочным трипсом на огурце

Расчет экономической эффективности применения Amblyseius cucumeris в борьбе с западным цветочным трипсом на огурце в ЗАО «Выборжец» в 2007 г. представлен в таблице 9.

Прибавку урожая рассчитывали как разницу между урожайностью на участке, с применением энтомофага и участках, где применялась химическая защита растений.

Выручку от реализации дополнительной продукции рассчитывали путём умножения расчётной величины прибавки урожая (в кг с м²) на среднюю реализационную цену за 1 кг выращенной продукции.

Чистый доход рассчитывали путем вычитания общих затрат на борьбу с трипсами из выручка от реализации дополнительной продукции.

Окупаемость затрат рассчитывали путем деления чистого дохода на стоимость общих затрат на борьбу с трипсом.

Таблица 9. Экономическая эффективность двух способов выпуска Amblyseius cucumeris для борьбы с западным цветочным трипсом на огурце (ЗАО «Выборжец», 2007 г.)

Окупаемость затрат при выпуске A. cucumeris замедленным способом, естественно, оказалась больше, чем методом разбрасывания отрубей с хищным клещом, т.к. во втором случае выпуски приходится проводить в 2 раза чаще, что также в 2 раза увеличивает затраты на борьбу с трипсами.

Как видно из результатов расчётов выпуск амблисейуса на кубик является экономически выгодным, при себестоимости защиты 13,6 тыс. рублей на 1 га. При выпуске хищных клещей методом разбрасывания необходимый объем выпускаемых клещей увеличивается в 2 раза. Соответственно в 2 раза увеличивается стоимость защиты 1 м². Окупаемость затрат в этом случае существенно снижается. Поэтому биологическую борьбу с трипсом на огурце, при выращивании его на гродане, керамзите, в лотках и т.п., с использованием амблисейуса, надо начинать при низкой численности вредителя (февраль-март), когда выпуск хищных клещей для борьбы с трипсами на кубик достаточно эффективен.

Несмотря на то, что стоимость биологической защиты огурца от трипса, с использованием амблисейуса при выпуске его на кубик, оказалась в 1,3 раза больше, чем 3 опрыскивания инсектицидами, дополнительная прибавка урожая компенсирует дополнительные затраты и даже делает биологическую защиту более выгодной.

Вероятно по этому, АО «Весна-Тихвин» и АО «Карельский», освоив методику разведения и применения амблисейуса, перестали проводить химические обработки от трипса. В настоящее время культура огурца в теплицах полностью защищается биологическим методом с помощью энтомофагов (фитосейулюс, амблисейус, энкарзия, афидиус).

4. Безопасность и экология

4.1 Анализ условий и охрана труда

В современных условиях ведения сельского хозяйства широко применяются различные химические вещества, перерабатывается большое количество пожароопасных материалов. Охрана труда работников сельского хозяйства связанных с защитой растений, прежде всего, должна предусматривать меры безопасности работы с пестицидами. Не смотря на то, что новые технологии ориентируются на производство малотоксичных для человека и окружающей среды ядохимикатов, очень важно соблюдать правила личной и общественной безопасности. Для химических обработок должны использоваться препараты в соответствии со 'Списком пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к использованию на территории РФ'.

Применение в сельском хозяйстве различных химических веществ требует строгого соблюдения требований, изложенных в санитарных правилах по хранению, транспортировке и применению удобрений, ядохимикатов и других химических веществ (Шкрабак, Казлаускас, 1989).

Общее руководство и ответственность за организацию безопасности труда на предприятиях возложена на руководителей хозяйств, по отраслям на главных специалистов. Работами с использованием химических веществ руководит начальник производственного участка, который проводит инструктаж на рабочем месте, следит за исправностью машин, обеспечивает рабочих средствами индивидуальной защиты и спецодеждой.

4.2 Организационные мероприятия и рекомендации по улучшению условий труда

Инструктажи по технике безопасности подразделяются на вводные, первичные, повторные, внеплановые и целевые. Первичный, повторный и внеплановый инструктажи проводит непосредственно руководитель работ (Вовк, Шкрабак, 1996). Первичный инструктаж проводят с вновь прибывшими или переведёнными на другую работу лицами, лично или группами на рабочем месте. Вводный инструктаж проводит инженер по охране труда или лицо, на которое возложены эти обязательства. Его проводят с вновь прибывшими на работу, практику или в командировку (Санитарные правила и нормы СанПин 1.2.1077-01 Министерства здравоохранения РФ от 8.11.01 № 34 г. Москва).

К работе с пестицидами допускаются лица, достигшие 18 лет, прошедшие медицинский осмотр и инструктаж по технике безопасности с обязательной регистрацией в журнале. Не допускаются кормящие и беременные женщины, лица, имеющие медицинские противопоказания.

При работе с сильнодействующими и высокотоксичными веществами продолжительность рабочего дня 4 часа, а при других работах с пестицидами - 6 часов (Лоранский и др., 1975).

Организация, ответственная за проведения работ, обеспечивает всех работающих спецодеждой и индивидуальными средствами защиты. На рабочих местах устанавливаются аптечки (Акимов, Ильин, 1984).

При подборе индивидуальных средств защиты учитываются физико-химические свойства препаратов, их токсичность, способ применения и условия работы.

Для защиты кожи используется спецодежда, рукавицы, сапоги. Работать с пылевидными веществами следует в комбинезоне из пыленепроницаемой ткани с гладкой поверхностью. При работе с жидкими препаратами должна применяться одежда из тканей с кислотнозащитной пропиткой или пылезащитная спецодежда с фартуком, покрытым плёнкой, и нарукавниками из прорезиненной ткани.

Для защиты глаз от попадания пестицидов следует применять герметичные защитные очки.

Для защиты органов дыхания применять нужно противопылевые респираторы J - 2к, «Астра 2», «Лепесток» и противогазы. Категорически запрещается применять марлевые повязки. После работы необходимо снять спецодежду, вымыть руки и лицо с мылом, прополоскать рот, принять гигиенический душ.

4.3 Производственная санитария

Обеспечение санитарно-технических условий, устраняющих производственный травматизм и профессиональные заболевания, является важнейшей обязанностью руководителей и специалистов.

Производственная санитария - это система организационных, технических и санитарных мероприятий и средств, предотвращающих воздействие на рабочих вредных факторов производства.

При некоторых технологических процессах на человека воздействует загрязненный воздух, производственный шум, другие факторы. Большинство работ в сельском хозяйстве проводится на открытом воздухе, где рабочие подвергаются атмосферным воздействиям в виде ветра, осадков, высокой и низкой температуры, которые неблагоприятно сказываются на их здоровье. В борьбе со всеми отрицательными воздействиями применяются различные способы их устранения.

В жаркое время года работы с ядохимикатами следует проводить только утром и вечером при наиболее низкой температуре воздуха, воздушных минимальных потоках и малой испаряемости. При применении пестицидов необходимо помнить, что в некоторых случаях возможно раздражение слизистой оболочки дыхательных путей и глаз. При работе с пестицидами необходимо иметь спецодежду и средства индивидуальной защиты.

При случайном попадании препарата в глаза, рот, на кожу следует промыть загрязнённые места струёй воды с добавлением соды (1 чайная ложка на стакан воды).

Профилактика отравлений пестицидами во многом определяется строгим соблюдением инструкций и выполнением правил личной гигиены.

Токсическое действие пестицидов на человека зависит от состояния организма, поэтому следует соблюдать рациональный режим труда, питания и отдыха. Во время работы с пестицидами нельзя курить, так как это способствует поступлению ядовитых веществ в организм. Действие их на лиц, употребляющих алкоголь перед работой или во время работы, усиливается в десятки раз.

Важную роль в профилактике отравлений играет рациональное питание, оно повышает сопротивляемость организма к действию ядовитых веществ. Пища должна быть богата белком, витаминами, продуктами содержащими крахмал и желатин, которые уменьшают раздражающее действие химических соединений и препятствуют их всасыванию.

При появлении раздражения кожных покровов или слизистых оболочек, аллергических явлений необходимо прекратить работу с пестицидами и обратиться к врачу (Акимов, Ильин, 1984).

В настоящее время на промышленных участках садовых агроценозов широко применяются синтетические половые феромоны с целью мониторинга опасных вредителей сельского хозяйства. Широкое применение феромонов в первую очередь необходимо для сохранения и оздоровления окружающей среды путем резкого сокращения использования пестицидов.

Проверка ряда феромонов на токсичность показала, что по существующей классификации они относятся к классу слабо токсичных соединений. К примеру, острая оральная токсичность для крыс находится в пределах 2000-34000 мг на 1 кг веса.

Следовательно, синтетические феромоны безопасны для человека и окружающей среды, но даже при использовании биологически активных веществ должны соблюдаться определенные правила по технике безопасности.

4.4 Техника безопасности и пожарная безопасность

По химическому составу многие феромоны являются алкенами, которые легко изомеризуются под действием солнечного света, ультрафиолетового излучения и озона. Поэтому до использования феромонные капсулы хранят в холодильнике в пакетах из фольги или в стеклянных сосудах с притертой пробкой. Капсулы берут только пинцетом, так как насекомые чувствительны к посторонним запахам.

Работы, связанные со сборкой феромонных ловушек, проводят в хорошо вентилируемых помещениях или непосредственно в поле.

При попадании энтомологического клея на поверхность кожи его удаляет тампоном, смоченным подсолнечным маслом или вазелином. Капсулы, клейкие вкладыши и одноразовые ловушки после использования закапывают или сжигают. После окончания работ необходимо тщательно вымыть руки с мылом.

Большой вред сельскому хозяйству наносят пожары: уничтожают урожай, складские помещения, приводят к гибели людей и животных. Пожарная безопасность обеспечивается системой предотвращения пожара и системой пожарной защиты.

Система предотвращения пожара - это комплекс организационных мероприятий и технических средств, исключающих возможность пожара. Для предотвращения пожара в первую очередь нужно не допускать образования горючей среды (не превышать допустимой концентрации горючих газов, паров или пыли в воздухе), а также внесения в нее источников зажигания.

Система пожарной защиты - мероприятия и средства, обеспечивающие безопасность людей и ограничение материального ущерба.

Основными причинами образования пожаров на сельскохозяйственных объектах являются следующие: неосторожное обращение с огнем, нарушение правил эксплуатации оборудования, неправильная установка печей и дымоходов, нарушение правил монтажа электроустановок, нарушение правил эксплуатации электрооборудования.

Работая в саду с использованием синтетических половых феромонов нужно помнить, что клей 'Пестификс', предназначенный для смазывания вкладышей, горюч. При работе с ним в садах, особенно при высоких температурах воздуха, отсутствии осадков, возникает угроза пожаров. Поэтому важно, чтобы клей, находился в тени, был защищен от попадания прямых солнечных лучей и не хранился на пожароопасных объектах. Все феромонные материалы могут легко воспламеняться, поэтому запрещается их располагать вблизи открытого огня.

4.5 Безопасность в чрезвычайных ситуациях

К чрезвычайным ситуациям относится радиоактивное загрязнение почвы, воздуха, воды. В период вегетации растений загрязняются радиоактивными веществами не только почва, но и растительный покров. В этом случае применяют комплекс защитных мероприятий, направленных на спасение и уменьшение радиоактивного заражения продукции растениеводства.

При радиоактивных выбросах АЭС в атмосферу защищать растения почти невозможно. В загрязнённой почве в течение многих лет будут содержаться долгоживущие изотопы стронций 90 и цезий 137, мигрирующие из почвы в растения. В подобных ситуациях проводят комплекс мероприятий, направленных на уменьшение перехода радиоактивных веществ в надземную часть растений. Наиболее эффективны известкование кислых почв и гипсование нейтральных, применение минеральных и органических удобрений (фосфорные - против Sr 90, калийные - против Cs 137) (Акимов, Ильин, 1984).

При поливе посевов в первые 1 - 2 дня после заражения с помощью дождевальных установок, значительная часть радиоактивных остатков смывается с растений. Радиоактивность снижается в 5 - 10 раз.

Поскольку с течением времени надземные органы растений очищаются, уборку следует проводить в возможно более поздние сроки. Вся сельскохозяйственная продукция надлежит радиометрическому контролю.

4.6 Экология

В последние десятилетия защита растений очень бурно развивается - это связано, прежде всего, с запросами сельскохозяйственного производства. На данный момент химический метод борьбы играет ведущую роль, так как он наиболее эффективен и доступен. Правильное, научно-обоснованное применение пестицидов позволяет получать хозяйствам дополнительную продукцию.

Однако пестициды, как потенциальные загрязнители природной среды, могут распространяться за пределы обрабатываемых участков и циркулировать в биосфере. Частицы пестицидов способны циркулировать в живых организмах по цепи питания. Кроме того, в результате систематического применения одних и тех же химических веществ у вредных организмов возникает резистентность к ним. Загрязнение окружающей среды ведёт к нарушению биоценозов, агробиоценозов и экосистемы в целом.

В связи с невозможностью полного отказа от применения пестицидов, возникают проблемы, связанные с устранением их побочного, вредного воздействия. Характер их распределения в окружающей среде зависит от метода их применения. Наиболее широко используется опрыскивание растений при котором воздействие на окружающую среду зависит от токсикологических свойств препарата, нормы его расхода на единицу площади, степени распыла. Загрязнение атмосферного воздуха и водоёмов происходит в результате сноса пестицидов ветром при опрыскивании, со сточными водами, а также при нарушении правил хранения и перевозок.

Интегрированная защита растений предполагает исключение применения химических средств, по крайней мере, в двух случаях: если защиту данной культуры можно осуществлять с помощью другого метода или их сочетания и если плотность популяции вредителя не столь высока, чтобы обусловить превышение экономического порога вредоносности (ЭПВ) и уровня эффективности их естественных врагов (УЭЕВ) (Бондаренко, 1986).

Экономические пороги вредоносности в нашей стране разрабатываются из трёхкратной окупаемости химического метода защиты растений. ЭПВ к настоящему времени определены уже более чем для 100 видов вредителей. Разрабатываются методики определения ЭПВ для сорняков и болезней растений.

УЭЕВ выражают в виде соотношения хищника и жертвы (для хищников), процента паразитированных особей или яиц (для паразитов).

Повысить эффективность средств защиты растений, а также сократить материальные и трудовые затраты позволяет постоянное совершенствование приемов и методов борьбы. Важное значение имеет правильное сочетание химического метода с другими приемами защиты растений.

Необходимо больше внимания уделять применению биологических средств защиты растений, усилить охрану водоёмов от загрязнения и истощения, совершенствовать технические процессы с целью сокращения выбросов вредных веществ в окружающую среду, усилить охрану лесов от пожаров и защиту их от вредителей, создавать зелёные зоны в городах, вести борьбу с эрозией почв.

Таким образом восстановить экологическое равновесие можно, используя средства защиты растений, альтернативные химическим, а также очищая сточные воды и почву, контролируя уровень загрязнения окружающей среды.

Выводы

1. Хищный клещ Amblyseius cucumeris может быть эффективно использованы для биологической борьбы с западным цветочным трипсом на огурце в условиях современных технологий выращивания данной овощной культуры в теплицах. Его использование может быть биологически даже более эффективно, чем некоторые варианты химического метода борьбы с этим вредителем, и экономически оправдано.

2. В первые 2 недели после выпуска хищного клеща, методом разбрасывания субстрата на листья, снижение численности западного цветочного трипса на растениях огурца оказывается несколько выше, чем при замедленном выпуске (внесение субстрата с хищными клещами на градановый кубик). В течении последующих трех недель после однократного выпуска более эффективным оказывается A. cucumeris. Это связано с более поздним началом выхода A. cucumeris из субстрата на кубике, но, в тоже время, с дополнительным размножением и более продолжительной по времени миграцией хищных клещей на растения.

3. Для эффективного сдерживания роста численности западного цветочного трипса на культуре огурца повторные выпуски методом разбрасывания субстрата следует проводить каждые 2 недели. При замедленном выпуске эту процедуру можно повторять в 2 раза реже, что снижает затраты и повышает экономическую эффективность биологической борьбы.

Список цитированной литературы

1. Акимов, И.А. Хищные клещи в закрытом грунте / Акимов И.А., Колодочка Л.А. - Киев, 1991. - 144 с.

2. Акимов, Н.И. Гражданская оборона на объектах сельскохозяйственного производства / Акимов Н.И., Ильин В.Г. - М.: Колос, 1984. - С. 42.

3. Акопян, С.Г. Трипсы овоще-бахчевых культур Армении: автореф. дисс. канд. с-х. наук / Акопян С. Г. - Ереван, 1975. - 39 с.

4. Ахатов, А.К. Защита тепличных и оранжерейных растений от вредителей / Ахатов А.К., Ижевский С.С., Мешков Ю.И., Борисов Б.А. - М.: КМК, 2004. - 307 с.

5. Ащеулов, В.И. Влияние технологии возделывания огурцов на эффективность Aphidius colemani Vier. / Ащеулов В.И., Коржова В.И. // Фитосанитарное оздоровление экосистем: материалы 2-го Всероссийского съезда по защите растений; РАСХН, ВИЗР. - СПб., 2005. - Т. 2. - С. 10-11.

6. Бегляров, Г.А. Хищный клещ - перспективный энтомофаг табачного трипса / Бегляров Г. А., Сучалкин Ф.А. // Защита растений. - 1983. - № 9. - С. 22-25.

7. Бегляров, Г.А. Методические указания по биологическому методу борьбы с табачным трипсом в защищённом грунте / Бегляров Г.А., Сучалкин Ф.А. - М., 1985. - 41 с.

8. Бондаренко, Н.В. Вредители овощных культур в парниках и теплицах / Бондаренко Н.В. - М.-Л.: Сельхозгиз, 1953. - 116 с.

9. Варфоломеева, Е.А. Комплекс насекомых - вредителей, обитающих в оранжереях ботанического сада Санкт-Петербурга / Варфоломеева Е.А. // Биоразнообразие. Интродукция растений. Сб. научн. трудов. - СПб., 2003. - С. 436-437.

10. Великань, В.С. Борьба с трипсами в теплицах Северо-Запада России / Великань В.С. // Агро ХХI. - 1997. - № 1. - С. 11.

11. Великань, В.С. Отряд Thysanoptera - трипсы / Великань В.С. // Определитель вредных и полезных беспозвоночных закрытого грунта. - СПб., 2003. - С. 35-45.

12. Великань, В.С. Биоэкологические особенности трипсов на культурах защищённого грунта./ Великань В.С., Иванова Г.П. // Всероссийский съезд по защите растений: тезисы докл. - СПб, 1995. - С. 36-37.

13. Великань, В.С. Изменение фауны трипсов (Thysanoptera) в теплицах России / Великань В.С., Иванова Г.П. // XII съезда Русского энтомологического общества: тезисы докл. - СПб., 2002. - С. 56-57.

14. Великань, В.С. Фауна трипсов в современных теплицах / Великань В.С., Иванова Г.П. // Защита и карантин растений. - 2005. - № 1. - С. 41-42.

15. Великань, В.С. Использование хищных клещей из рода Amblyseius против трипсов в теплицах Северо-Запада России / Великань В.С., Доброхотов С.А. // Вестник защиты растений / ВИЗР. - СПб., 2005. - № 2. - С. 37-44.

16. Вовк, А.И. Охрана труда в растениеводстве / Вовк А.И., Шкрабак В.С. - М.: Росагропромиздат, 1996. - 176 с.

17. Войтенко, М.П. Листовой или оранжерейный трипс и меры борьбы с ними / Войтенко М.П. // Защита растений, сборник 14, издательство Всесоюзной академии наук. - Л., 1937. - С. 112-113.

18. Волков, О.Г. Методические указания по трипсу Пальми Thrips Palmi (Thysanoptera, Thripidae) / Волков О.Г. // Сборник инструктивных и методических материалов по карантину растений. - Барнаул, 2000. - С. 118-125.

19. Галахов, П.Н. Основные вредители сельскохозяйственных культур на Обском Крайнем Севере и мероприятия по борьбе с ними / Галахов П.Н. // Доклады ВАСХНИЛ. - М., 1945. - №№ 7-8. - С. 37-40.

20. Герасимов, Б.А. Борьба с трипсами на огурцах и луке / Герасимов Б.А. // Сады и огороды. - 1941.- № 3. - С. 15-16.

21. Доброхотов, С.А. Трипсы на огурце и луке и биологическая борьба с ними в теплицах / Доброхотов С.А. // Р.Ж. «Защита растений от вредителей и болезней». -1987. - № 12. - С. 11.

22. Доброхотов, С.А. Совершенствование методов разведения и применения хищных клещей из рода Amblyseius для борьбы с трипсами в теплицах: дисс. канд. сельскохозяйственных наук / Доброхотов С.А. - Санкт-Петербург, 2008. 240 с.

23. Другова, Е.В. Поставить преграду для проникновения отсутствующих у нас вредителей / Другова Е.В., Варфоломеева Е.А. // Защита и карантин растений. - 2006. - № 2. - С. 42-43.

24. Другова, Е.В. Особенности фитосанитарного контроля за вредителями тепличных культур / Другова Е.В., Нестеров В.А. // Защита и карантин растений. - 2004. - № 2. - С. 44-45.

25. Другова, Е.В. Калифорнийский трипс Frankliniella occidentalis Perg. в тепличных хозяйствах Санкт-Петербурга / Другова Е.В., Шмидт В.Л. // Всероссийский съезд по защите растений: тезисы докл. - СПб, 1995. - С. 22.

26. Дядечко, Н.П. Трипсы, или бахромчатокрылые насекомые (Thysanopte-ra) Европейской части СССР / Дядечко Н.П. - Киев, 1964. - 386 с.

27. Жильцова, Л.А. Отряд Thysanoptera - Пузыреногие, или трипсы / Жильцова Л.А., Дербенёва Н.Н. // В кн.: Насекомые и клещи - вредители сельскохозяйственных культур, ред. Крыжановский О.Л., Данциг Е.М. - Л., - 1972. - Т.1. - С. 262-283.

28. Зорин, П. Из-под южного неба в северные теплицы / Зорин П. // Сборник ВИЗР. - Л., 1934. - С. 176-178.

29. Иванова, Г.П. Формирование реверсии резистентности в популяциях трипсов на культурах защищённого грунта в Северо-Западном регионе России / Иванова Г.П., Великань В.С. // Современное состояние проблемы резистентности вредителей и возбудителей болезней и сорняков к пестицидам в России и сопредельных странах на рубеже XXI века: материалы девятого совещания (20-22 декабря 2000 г., СПб.). - СПб., 2000. - С. 53-54

30. Иванова, Г.П. Трипсы - вредители овощных и декоративных культур / Иванова Г.П., Великань В.С., Буркова Л.А., Белых Е.Б. // Защита растений. - 1991. - № 6. - С. 61-62.

31. Ижевский, С.С. Западный цветочный трипс / Ижевский С.С. // Защита растений. - 1996. - № 2. - С. 34-35.

32. Ижевский, С.С. Применение энтомофагов для борьбы в закрытом грунте за рубежом / Ижевский С.С. // Защита и карантин растений. 2005. - № 7. - С. 22-35.

33. Ижевский, С.С. Первые находки эхинотрипса американского Echino-thrips americanus Morgan (Thysanoptera: Thripidae) на территории России / Ижевский С.С., Миронова М.К. // www.sevin.ru/invasjour/issue/2007 _1/Mi-ronova/ doc. 3 c.

34. Ижевский, С.С. У наших цветов новый вредитель / Ижевский С.С., Миронова М.К., Антипова О.В. // Цветоводство. - 1997. - № 3. - С. 6-7.

35. Ижевский, С.С. Защита тепличных и оранжерейных растений от вредителей / Ижевский С.С., Ахатов А.К., Олейник К.Н., Миронова М.К., Борисов Б.А. - М.: КМК, 1999. - 399 с.

36. Ион, О.И. Пузыреногие из Новгородской губернии / Ион О.И. // Энтомологическое обозрение. - 1930. - Т. 24. - №№ 3-4. - С. 118-119.

37. Клишина, И.С. Видовой состав фитофагов в теплицах Северо-Запада России / Клишина И.С., Великань В.С. // Достижения энтомологии на службе агропромышленного комплекса, лесного хозяйства и медицины: тезисы докладов XIII съезда РЭО. - Краснодар, 9-15 сентября 2007. - С. 95-96.

38. Кольцов, П.Д. Экономическая оценка биологических средств при комплексной защите растений в закрытом грунте / Кольцов П.Д., Черкасов В.А. // Эффективность биологического метода защиты растений. Сб. научн. трудов. - Кишинёв, 1981. - С. 64-67.

39. Красавина, Л.П. Вредители, энтомофаги и акарифаги закрытого грунта / Красавина Л.П., Дорохова Г.И., Великань В.С., Белякова Н.А., Козлова Е.Г. - СПб., 2000. - 56 с.

40. Лоранский, Д.Н. Меры безопасности при работах с пестицидами и минеральными удобрениями / Лоранский Д.Н., Гуревич Г.П., Красильщиков М.И., Цанков В.Г. - М.: Колос, 1975. - С. 224.

41. Макарец, Л.И. Определение экономической эффективности мероприятий по защите растений / Макарец Л.И. // Методические указания для студентов факультета защиты растений. - Санкт-Петербург, 2005. - 17 с

42. Мешков, Ю.И. Разведение и применение хищного клеща Neoseiulus cucumeris в борьбе с прозрачным земляничным клещом / Мешков Ю.И. // Защита и карантин растений. - 2000. - № 6. - С. 38-40.

43. Миронова, М.К. Биологический контроль численности западного цветочного трипса / Миронова М.К. // Защита и карантин растений. - 1996. - № 10. - С. 28-30.

44. Поздняков, С.А. Биологическая эффективность некоторых инсектицидов против западного цветочного трипса Frankliniella occidentalis Pergande / Поздняков С.А. // Гавриш. - 2004. - № 2. - С 25-26.

45. Поздняков, С.А. Западный цветочный трипс - Frankliniella occidentalis Pergande, особенности жизненного цикла и меры борьбы / Поздняков С.А., Чижов В.Н. // Гавриш. - 2003. - № 1. - С. 18-20.

46. Попов, Н.А. Биология табачного трипса на овощных и цветочных растениях защищённого грунта / Попов Н.А., Шевченко В.Б. // В кн: Естественные враги насекомых-фитофагов. - Кишинёв: Штиинца, 1986. - С. 24-30.

47. Славгородская-Куприева, Л.Е. Вредители и болезни огурца в теплицах Крыма и меры борьбы с отдельными видами / Славгородская-Куприева Л.Е., Жилнина Л.С. // Интегрированная защита растений от вредителей и болезней сельскохозяйственных культур. Сб. научн. трудов. - Киев, 1983. - С. 89-93.

48. Слепко, Е.В. Биоценотическое обоснование тактики и норм выпуска хищного клеща амблисейуса для борьбы с табачным трипсом на овощных культурах в теплицах / Слепко Е.В. // Сб. научн. трудов СПбГАУ. - СПб., 1993. - С. 19-25.

49. Cлепко, Е.В. Возможности применения на растениях огурца фитосейид как энтомофагов против различных видов трипсов / Cлепко Е.В., Утянская Т.Ю. // Растение и почва, проблемы агрохимии, агрофизиологии и физиологии: тезисы докладов Всероссийской молодёжной научной конференции (СПб, 6-10 декабря 1999) - СПб., 1999. - С. 198-199.

50. Совершенова, В.А. Методы выявления и идентификации пальмового трипса / Совершенова В.А., Левченко В.И. // Защита и карантин растений. -2004. - № 4. - С. 30-32.

51. Список пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. / Приложение к журналу «Защита растений». 2007. - 386 с.

52. Сучалкин, Ф.А. Перспективы биологической борьбы с табачным трипсом в закрытом грунте / Сучалкин Ф.А. // В кн: Актуальные вопросы теории и практики защиты сельскохозяйственных растений. - М., 1982. - С. 87-88.

53. Сучалкин, Ф.А. Энтомофаги табачного трипса / Сучалкин Ф.А. // Информ. Бюлл. ВПС МОББ. - 1983. - № 6. - С. 56-68.

54. Сучалкин, Ф.А. Разработка биологического метода борьбы с табачным трипсом на огурцах в защищённом грунте: автореф. дисс. канд. биол. наук / Сучалкин Ф.А. - Голицыно, 1987. - 24 с.

55. Сучалкин, Ф.А. Энтомофаги табачного трипса / Сучалкин Ф.А. // Биологический метод борьбы с вредителями овощных культур. Сб. научн. трудов. - М., 1989. - С. 48-53.

56. Урбах, В.Ю. Биометрические методы (статистическая обработка опытных данных в биологии, сельском хозяйстве и медицине) / Урбах В.Ю. - М.: Наука, 1964. - 415 с.

57. Шевченко, В.Б. Влияние температуры на развитие хищника табачного трипса Amblyseius mckenziei / Шевченко В.Б // Биологический метод защиты растений от вредителей и болезней и охрана окружающей среды: тезисы докл. - Кишинёв, 1984. - С. 70-71.

58. Шевченко, В.Б. Табачный трипс. Амблисейус. / Шевченко В.Б. // Массовое разведение и применение энтомофагов в защищённом грунте. Методические рекомендации. - М.: ВАСХНИЛ, 1991. - С. 39-45

59. Шевченко, В.Б. Биологическое обоснование и оптимизация применения хищного клеща амблисейуса против табачного трипса в защищённом грунте: автореф. дисс. канд. биол. наук / Шевченко В.Б. - СПб., 1992. - 18 с.

60. Шкрабак, В.С. Охрана труда / Шкрабак В. С., Казлаускас Г. К. - М.: Агропромиздат, 1989. - С. 24-30.

61. Albert, R. Biologische Bekдmpfung von Thripsen in Cemuse und Zierpflanzenkulturen / Albert R., Schrameyer K., Schneller H., Albert A. // TASPO magazin. Dezember, 1989. - S. 15-18.

62. Byns, E.S. Thrips tabaci Lind. (Thysanoptera, Thripidae) - distribution and behavior on glasshouse cucumber in relation to chemical and integrated control / Byns E.S., Hall R.A, Picford R.I.I. // Entomologist monthly Magazine. - 1982. - Vol. 118. - P. 65-68.

63. Hulshof, J. Alternative food source for thrips predator in cucumber: also a delicacy for the western flower thrips Frankliniella occidentalis / Hulshof J., Vanninen I. // IOBS/WPRS Bulletin. - 1999 - Vol. 2. - N 1. - P. 113-116

64. Hulshof, J. Life History characteristics of Frankliniella occidentalis on cucumber leaves with and without supplemental food / Hulshof J., Vanninen I. // Entomologia Experimentalis et Applicata. - 2003. - Vol. 108. - N 1. - P. 19-32.

65. Kloft, W. Zur Frage der Speichelinjekten beim Saugakt von Thrips tabaci Lind. Naturwissenschaften / Kloft W., Ehrhardt P. // - 1959. - Band 46, - H. 20. - S. 586-587.

66. Корреrt, B.W. Thrips and their natural enemies / Корреrt B.W. // Knowling and recognising . - 1993. - P. 33-49.

67. Loomans, A.J.M. Thrips Palmi: A next thrips pest in line to be into Europe / Loomans A.J.M., Vierbergen G. // WPRS/JOBC «Mediterran Climat». - 1997. - Vol. 20 (4). - P. 162-168.

68. Lublinkof, J. Development and reproductive capacity of Frankliniella occidentalis (Tysanoptera; Thripidae) reared at three different temperatures / Lublinkof J., Foster D.E.// J. Entomol. Soc. Am. - 1977. - Vol. 85. - P. 744-754.

69. Markula, M. Biological control of pest in glasshouse in Finland / Markula M., Titanen K. // Bulletin SROP. - 1980. - Vol. III.- N 3. - P. 127-134.

70. Morison, G.D. Review of British Glasshouse Thysanoptera / Morison G.D. // The Transactions of the Royal Entomological Society of London. - 1957. - Vol. 109. - Part 16. - P. 467-534.

71. Nakahara, S. The genus Trips Linnaeus (Thysanoptera: Thripidae) of the New World / Nakahara S. // USDA, Technical Bull. - 1994. - № 1822. - 183 pp.

72. Oetting, R.D. Biology and identification of thrips on greenhouse ornamentals / Oetting R.D., Beshear R.J., Liu Tong-Xian, Braman S.K. // The Georgia Agricultural Experiment Station, Research Bulletin. - 1993. - N 414. - P. 1-18.

73. Oudemans, A.C. Thyphlodromus cucumeris, foenilis, reticulatus, similes / Oudemans A.C. // Acarologische aanteekeningen C. I I. Ent. Ber. - 1930. - 8. - N. 172. - P. 69-74.

74. Parker, B.L. Trips biology and management / Parker B.L., Skinner M., Lewis T., eds. - Proc. Int. Conf. Thysanoptera, N.Y. - Plenum Press. - 1985. - 636 pp.

75. Riley, D.G. Does natural deposition pollen affect the oviopositional behavior of Frankliniella occidentalis and Frankliniella fusca? / Riley D.G., Chitturi A., Sparks A.N. // Entomologia Experimentalis et Applicata. - 2007. - Vol. 124. - N 2. - P. 133-141.

76. Ramakers, P.M.J. Biological control of Thrips tabaci (Thysanoptera: Thripidae) with Amblyseius spp. (Acari: Phytoseiidae) / Ramakers P.M.J. // Bul. SROP/WPRS. - 1980. Vol. III/3. -P. 203-207.

77. Ravensberg, W.J. Developments in the integrated control of Frankliniella occidentalis in capsicum and cucumber / Ravensberg W.J., Dissevelt G.M., Altena K., Simonse M.P. // OEPP/EPPO Bull. - 1992. - № 22. - P. 387-396.

78. Rosenheim, J.A. Direct feeding damage on cucumber by mixed species infestations of Thrips palmi and Frankliniella occidentalis (Thysanoptera: Thripidae) / Rosenheim J.A., Welter S.C., Johnson M.W., Mau R.F.L. and Gusukuma- Minuto L.R. // J. Econ. Ent. - 1990. - Vol. 83 (4). - P. 1519-1525.

79. Shipp, J.L. Economic Injury Levels Western Flower Thrips (Thysanoptera: Thripidae) on Greenhouse Sweet Pepper / Shipp J.L., Bins M.R., Hao X. and Wang K. // J. Econ. Entomol. - 1998. - Vol. 91. - N 3. - P. 671-677

80. Shipp, J.L. Economic Injury Levels Western Flower Thrips (Thysanoptera: Thripidae) on Greenhouse Cucumber / Shipp J.L., Wang K. and Bins M.R. // J. Econ. Entomol. - 2000. -Vol. 93. - N 6. - P. 1732-1740.

81. Shirsk, F.H. Hibernation of Onion Thrips in Southern Idaho / Shirsk F.H // J. Econ. Entomol. - 1951. - Vol. 44. - N 6. - P. 1020-1021

82. Strassen, R. Frankliniella occidentalis (Pergande, 1895), ein nordamerikanischer Fransenflьgler (Thysanoptera) als neuer Bewohner europдscher Gewдchshдuer / Strassen R.// - Nachrichtenbl. dt. Pflanzenschutzd. - 1988. - Vol. 38 (6). -S. 86-88.

83. Suzuki, H. Studies on Ecology and Control of Southern Yellow Thrips, Thrips palmi Karny (Thysanoptera: Thripidae) / Suzuki H., Miyara A., // Bull. Okinawa agricultural experiment. Station. - Naha, Japan, 1980. - N 9. - P. 85-101.

84. Van Rijn, P.C.J. Pollen improves thrips control with predator mites / Van Rijn P.C.J., van Houten Y.M., Sabelis M.W. // IOBC/WPRS Bulletin. - 1999. - Vol. 22. - P. 209-212.

85. Vierbergen, G. Kontribution to knowledge of Frankliniella schultzei (Thysanoptera: Thripidae) / Vierbergen G., W.P. Mantel // Ent. Ber. Amst. - 1991 - Vol. 51 (1). - P. 7-12.

86. Zegula, T. Der gefurchteste Quarantaneschadling Thrips Palmi Karny (Thysanoptera: Thripidae) und dessen Auftreten in Europa / Zegula T., Blaeser P., Sengonca C. // Mitt. Dtsch. Gel. Allg. Angew. Ent. - Giessen, - 2004. - Vol. 14. - S. 381-385.